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非洲猪瘟病毒检测 免核酸提取荧光PCR法DB43/T 1670-2019.pdf

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非洲猪瘟病毒检测 免核酸提取荧光PCR法DB43/T 1670-2019.pdf

湖南省地方标准DB43DB43/T 1670 2019 ICS 65.020.30B 41湖南省市场监督管理局 发 布2019-10-15发布 2019-12-15实施非洲猪瘟病毒检测 免核酸提取荧光 PCR法Detection of African Swine Fever Virus Real-time PCR without DNA Extraction Method DB43/T 1670 2019 I 目 次 前言 1 范围 12 规范性引用文件 13 术语和定义 14 主要仪器设备 15 主要耗材 16 试剂 27 样品处理 28 样品检测 39 结果判定 310 生物安全要求 3附录 A(规范性附录)试剂的配制 4 DB43/T 1670 2019 II 前 言 本标准按 GB/T 1.1 2009给出的规则起草。请注意本标准的某些内容可能涉及专利,本标准发布机构不承担识别这些专利的责任。本标准由湖南省畜牧水产局提出,由湖南省农业农村 厅归口。本标准起草 单位:湖南省 动 物 疫病预防控 制 中心、湖南 国 测生物 科技有限公司。本标准主要起草 人:何世成、王昌建、刘道新、喻正军、石建、范 叶、林源、唐小明、黄建龙。DB43/T 1670 2019 1 非洲猪瘟病毒检测 免核酸提取荧光 PCR法 1 范围 本标准规定 了免核酸 提 取 检测 非洲猪瘟病毒核酸 的 荧光 PCR方法。本标准 适 用 于我 省范围内 开展非洲猪瘟病毒核酸快速 检测。2 规范性引用文件 下列 文件 对于 本文件的 应 用 是必 不可 少 的。凡是 注 日期 的引用文件,仅所 注 日期 的 版 本 适 用 于 本文件。凡是 不注 日期 的引用文件,其最新版 本(包括所有 的 修改单)适 用 于 本文件。GB 19489 实验室 生物安全 通 用要求 NY/T 541 兽医诊断 样品 采集、保存 与运输 技 术规范 NY/T 1948 兽医实验室 生物安全要求 通 则 3 术语和定义 下列 术语和定义 适 用 于 本文件。3.1 非洲猪瘟(African Swine fever,ASF)由 非洲猪瘟病毒(African Swine fever virus,ASFV)引起的 猪 的 一种急 性、热 性、高度接触 性 传染病,其 发 病 率 和 病 死率均 可 达到 100%,是世 界 动 物 卫 生 组织(OIE)的 法 定 报告传染 病,在 我国 属 于 一 类 动 物 疫病。3.2 荧光 PCR 实 时 荧光 聚合酶链式反 应(Real-time polymerase chain reaction)。4 主要仪器设备 荧光 PCR仪;台式离 心 机(转 速 12 000 r/m);小 型离 心 机(转 速 6 000 r/m);-20冰箱;微量移液 器(0.2 2.5)L、(1 10)L、(10 100)L、(20 200)L、(100 1 000)L等 规格;组织匀浆 仪;高压灭菌锅;分析天平(精度 0.01g);生物安全 柜。5 主要耗材 无 DNase/RNase 1.5 mL离 心 管;与 荧光 PCR仪 匹 配的 PCR薄壁管或 8联排管;与移液 器配 套 的 各规 格吸头。DB43/T 1670 2019 26 试剂 6.1 引物与探针 引物和 探针 的设 计基 于 ASFV vp72基因序 列,序 列 如 下:a)上游 引物:5-GATGATGATTACCTTYGCYTTG-3,使 用 浓度为 20 mol/L。b)下 游 引物:5-CAACTAATATAAAAYTCTCTTGCTCT-3,使 用 浓度为 20 mol/L。c)探针:5-FAM-CCACGGGAGGAATAYCAAC-Mgb-3,使 用 浓度为 10 mol/L。6.2 核酸释放剂 核酸 释放 剂配制 方法 见 附录 A.1。6.3 荧光 PCR试剂 6.3.1 Taq DNA聚合酶,浓度为 5 U/L。6.3.2 尿嘧啶-N-糖基化酶(UNG酶),浓度为 2 U/L。6.3.3 dNTPs:由 等量 dATP、dUTP、dGTP、dCTP组 成,终 浓度为 25 mmol/L。6.3.4 2 PCR缓冲 液:配制 方法 见 附录 A.2。6.4 阴性与阳性对照 6.4.1 阳 性 对 照:灭 活 的 非洲猪瘟病毒 阳 性样品,Ct值 30,-20 保存 备用。6.4.2 阴 性 对 照:非洲猪瘟病毒核酸 阴 性样品,-20 保存 备用。7 样品处理 7.1 样品类型 猪 脾脏、淋巴 结 等组织 样品,血清、抗凝血,拭子 样品。样品的 采集、保存 与运输 按 照 NY/T 541的规定 执行。7.2 样品预处理 不 同 类型 样品 预 处理 方法 如 下:a)组织 样品:剪 取 待 检 组织 约 50 mg置 于 1.5 mL离 心 管 中,加入 200 L PBS(0.01 mol/L,pH 7.2),使 用 组织匀浆 仪 研磨 成 悬 液,12 000 r/m离 心 1 min,取 上 清待 检。b)血清 或 抗凝血 样品:无 需 预 处理。c)拭子 样品:准备 1.5 mL 离 心 管,加入 1 mL PBS(0.01 mol/L,pH 7.2),将拭子置入 管 中,振荡后 取 浸泡 液 待 检。7.3 样品灭活 将 预 处理 后 的 待 检样品 经 60 30 min灭 活。7.4 样品保存 样品 在 2 8 条 件 下保存应 不 超过 24 h,超 24h后 检测 需冷冻 保存。DB43/T 1670 2019 3 8 样品检测 8.1 核酸释放 8.1.1 在 样品制备 区,吸 取核酸 释放 剂 100 L于 1.5 mL离 心 管 中,加入已 灭 活待 检样品 10 L20 L,充 分 混 匀。85 95 处理 10 min,然后 12 000 r/m离 心 1 min,取 上 清 液 作 为 模板立即进 行 荧光 PCR检测。同 时 设 立阴 性 对 照、阳 性 对 照。8.1.2 待 检样品 也 可 使 用 商 品 化 病毒核酸 提 取 试剂 盒进行 DNA提 取,操作 按试剂 盒说 明 书进行。8.2 荧光 PCR检测 8.2.1 反 应 体系 配制:根据待 检样品 数 量,在 试剂准备 区 按 比例 配制 反 应 体系:Taq DNA聚合酶 0.5 L、UNG酶 0.25 L、dNTPs 0.25 L、2 PCR缓冲 液 12.5 L、上 下 游 引物 各 0.75 L、探针 0.5 L、无 DNase/RNase水 4.5 L。充 分 混 匀 后,20 L/管分 装,转移 至 样品制备 区加 样。8.2.2 加 样:吸 取 5 L模板加至 反 应 体系,转移到 扩增区。8.2.3 扩增:将 反 应 管 置 于荧光 PCR仪 中,选择 FAM通道 进行 检测,设 置 反 应 体系 为 25 L,反 应 程 序如 下:第 一 阶段,预 反 应 50/2 min;第二阶段,预 变 性 95/2 min;第三阶段,95/15 s,退火、延伸、荧光 收 集 60/30 s(收 集荧光),40个循环;第四阶段,冷却 25/10 s。9 结果判定 9.1 基线设置 反 应 结 束后,保存 结果,仪器 对 结果 进行自 动 分析,给出 Ct值。注意 查看 结果的 扩增 曲线 的 形状,存 在 Ct值 的结果 呈 S型 扩增 曲线。也 可 根据 实 际情况 自行 调整:基 线 起 点 值 调 至 3 15、基 线 终 点 值调 至 5 20,调整 阴 性 对 照 的 扩增 曲线 使 其 平 直 或 低 于 阈 值 线,使各 项参 数 符 合 下 述“9.2 实验有 效 性”中 的要求。9.2 实验有效性 当 阳 性 对 照 Ct值 30、呈 S型 扩增 曲线,阴 性 对 照 无 Ct值 时,实验成 立,否 则 实验 结果 无 效。9.3 结果判定 样品 Ct值 35且呈 S型 扩增 曲线,结果判定 为 ASFV核酸 阳 性。样品 Ct值 在 35 40之间,结果判定可 疑,需 重复 检测 一 次,复 检 无 Ct值,判定 为 ASFV核酸 阴 性,反 之 为 阳 性。样品 无 Ct值 或无 S型 扩增 曲线,结果判定 为 ASFV核酸 阴 性。10 生物安全要求 检测 过程 及 实验室 废弃 物处 置 应 遵守 GB 19489、NY/T 1948等 生物安全 管 理 相关 要求。DB43/T 1670 2019 4 附录 A(规范性附录)试剂的配制 A.1 核酸释放剂配制方法 NaOH 0.8 g KCl 3.73 g EDTA 0.37 g Triton X-100 1 mL 加 无 DNase/RNase水 充 分 溶解,并 定容 至 1000 mL,分 装 备用。A.2 2 PCR缓冲液配制方法 Tris碱 24.2 g MgCl2 6H2O 2.03 g KCl 7.46 g(NH4)2SO4 1.3 g 甘油 80 ml 加 无 DNase/RNase水 充 分 溶解,使 用 浓 盐 酸 将 溶 液 pH值 调 至 8.3,并 定容 至 1000 mL,分 装 备用。

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