ICS 11.220 B 41 DB37 山东省 地 方 标 准 DB37/T 3997 2020 细菌耐药 基因blaNDM常见亚型 的环介导 等温扩增检测 技术 Loop-mediated isothermal amplification detection technique for common subtypes of bacterial resistance gene blaNDM 2020-06-08 发布 2020-07-08 实施 山 东 省 市 场 监 督 管 理 局 发布 DB37/T 3997 2020 I 前 言 本标准按照GB/T 1.12009给出的规则起草。本标准由山东省畜牧兽医局提出并组织实施。本标准由山东省畜牧业标准化技术委员会归口。本标准主要起草单位：山东省农业科学院畜牧兽医研究所、山东润达检测技术有限公司。本标准主要起草人：齐静、刘玉庆、杜以军、李璐璐、胡明、骆延波、张庆、张印、赵效南、任金瑞、刘军伟、王怀中、陶海英。DB37/T 3997 2020 1 细菌 耐药 基因 blaNDM 常见亚 型的环介 导等温 扩增检测 技术 1 范围 本标准规定了细菌耐药基因blaNDM常见亚型（blaNDM-1、blaNDM-4、blaNDM-5和blaNDM-9）的环介导等温扩增LAMP（Loop-Mediated Isothermal Amplification）检测技术的操作步骤。本标准适用于实验室及临床样本的细菌耐药基因blaNDM常见亚型（blaNDM-1、blaNDM-4、blaNDM-5和blaNDM-9）的快速可视化检测，其他几个亚型的检测可以参考使用。2 规范性 引用 文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 GB/T 16489 水质 硫化物的测定 亚甲基蓝分光光度法 3 试验原 理 本标准所应用的试验原理为：根据序列保守区域设计一对外引物、一对内引物和一对环引物特异性识别靶序列上六个独立区域，在Bst DNA聚合酶的作用下引起自循环链置换反应，大量合成目标DNA的同时伴随有副产物焦磷酸镁白色沉淀产生，可以实现恒温扩增和快速检测，结果通过肉眼即可判定。4 试剂或 材料 除非特别规定所用试剂均用分析纯水：符合国标GB/T 6682一级水的规定。4.1 Bst DNA聚合酶。4.2 0.5TBE缓冲液：配制见附录 A.2。4.3 2%琼脂糖电泳液：配制见附录 A.3。4.4 无毒核酸染料。4.5 DNA Marker 2000。4.6 商品化的细菌基因组 DNA提取试剂盒。4.7 引物：blaNDM基因几个国内常见亚型的 LAMP 检测引物如下：外引物F3：5-GGCCACACCAGTGACAAT-3；外引物B3：5-GCGGAATGGTCATCACGAT-3；内引物FIP：5-ACTTGGCCTTGCTGTCCTTGATGTTGGGATCGACGGCAC-3；内引物BIP：5-CGCTCGGCAATCTCGGTGATGCTGGCCTTGGGGAACGC-3；环引物LF：5-GCTGTAGCGAAAACCACCG-3；环引物LB：5-ACACTGAGCACTACGCCG-3。DB37/T 3997 2020 2 5 仪器设 备 5.1 微量移液器：10 L、20 L、100 L、1 000 L。5.2 低温高速离心机：离心力20 000 g。5.3 电热恒温水浴锅。5.4 稳流稳压电泳仪。5.5 水平电泳槽。5.6 凝胶成像系统。5.7 电子分析天平：精度 0.001 g。6 试验步 骤 6.1 样品 在生物安全柜中，将采集的样品（如人或动物的肛拭子、鼻拭子或肝脏、脾脏、脑等不同脏器组织等）无菌划线特异性筛选培养基或哥伦比亚血琼脂培养基，置37 培养箱过夜培养12 h18 h，获得细菌单菌落，经二次纯化后，挑取单菌落于BHI营养肉汤中过夜培养12 h18 h，用于提取细菌基因组DNA。6.2 DNA 的 提取 收集过夜培养的待检细菌菌液1 mL（菌液浓度的OD600值大于1.0）到1.5 mL的EP管中，12 000 g离心2 min，彻底弃上清，取沉淀用商品化的细菌基因组DNA提取试剂盒提取细菌基因组总DNA，最后溶于50 L灭菌水中，测定DNA的浓度，-20 保存备用。6.3 反应体 系 反应体系见表1。表1 环介导 等温 扩 增 LAMP 反 应 体系 1 2等温缓冲液(RM)12.5 L 2 外引物 B3/F3(100 M)0.1 L2 3 内引物 BIP/FIP(100 M)0.4 L2 4 环引物 LF/LB(100 M)0.2 L2 5 Bst DNA 聚合酶 1.0 L 6 细菌基因组 DNA 2.0 L 7 灭菌水 8.1 L 其中：2等温反应缓冲液RM含有40 mM pH为8.8的Tris-HCl、20 mM KCl、16 mM MgSO4、20 mM（NH4）2SO4、0.2wt%Tween20、1.6 M甜菜碱、2.8 mM dNTP。6.4 扩增 检测blaNDM基因的LAMP反应体系，包括若干个装有反应液的LAMP反应管（25 L/管），在每个LAMP反应管内设置LAMP反应体系，详见表1。每次LAMP反应均应设置1管为阳性对照，加入1.0 L含有细菌blaNDM-1基因的洛菲不动杆菌基因组DNA（300 ng/L）；设置1管为阴性对照，加入1.0 L的灭菌水取代细菌基因组DNA。DB37/T 3997 2020 3 将上述LAMP反应管轻轻混匀后，置恒温水浴锅中进行扩增，如果选择荧光目视检测，可以选择在表1步骤5之后每个LAMP反应管中添加1.0 L钙黄绿素，相应地整个25 L体系中减少1.0 L灭菌水，再加入相应地细菌基因组DNA，轻轻混匀后，置恒温水浴锅中进行扩增，具体参数见表2。表2 LAMP 反应 程序 设定 步骤 温度 时间 功能 1 65 40 min 恒温扩增 2 80 5 min 灭活酶处理 试验过程注意事项：LAMP反应产物极易产生气溶胶污染，是LAMP研究中首要避免的因素之一。控制气溶胶污染的解决方法为：1、对核酸提取和扩增进行严格分区，2、反应全程禁止开启反应管。3、配置LAMP反应体系尽量在冰上进行，操作Bst DNA聚合酶时不能用涡旋振荡器过激搅拌，避免酶的失活，应该使用轻轻弹击反应管或颠倒混匀的方式进行，操作过程尽量避免产生气泡。7 结果分 析和 判定 7.1 感官结 果分 析和 判定 7.1.1 反应结束后，观察反应管内液体的颜色和状态，如果底部出现与阳性对照一样的白色沉淀为阳性结果（参见附录B：图1A 泳道1所示），如果不出现白色沉淀为阴性结果（参见附录 B：图 1A 泳道2）。7.1.2 如果在扩增反应前，每个反应管中加入 1.0 L 钙黄绿素，反应结束后扩增产物变为与阳性对照一样的绿色为阳性结果（参见附录 B：图 1A泳道 3），橙色的为阴性结果（参见附录 B：图 1A泳道4）。7.2 电泳结 果分 析和 判定 7.2.1 2%琼 脂糖 凝胶 板的 制备（参见附 录 A.3）称取2.0 g琼脂糖，加入100 mL 0.5TBE缓冲液（参见附录A.2）中，加热融化，温度降低至55 后加入1%的无毒核酸染料，倒入电泳槽中冷却待用。7.2.2 加样 将LAMP扩增产物5 L与1 L 6Loading Buffer混合，点样于2%琼脂糖凝胶孔中，以DNA Marker 2000作相对分子质量指示。每次电泳至少加1孔阳性和1孔阴性的扩增产物作对照。7.2.3 电泳及 结果 判定 保持稳定电压80 V，电泳20 min，电泳反应结束后，在阳性和阴性对照成立的情况下，出现瀑布样条带的泳道判为阳性，说明待测样品中含有超级细菌blaNDM基因（参见附录B：图1B泳道1和3），不出现瀑布样条带的为阴性（参见附录B：图1B泳道2和4）。DB37/T 3997 2020 4 A A 附 录 A（规范 性附 录）试剂的 配制 A.1 10 TBE 缓 冲液 三羟甲基氨基甲烷（Tris）108 g 乙二胺四乙酸（Na2EDTA.2H2O）7.44 g 硼酸（Boric acid）55 g 灭菌水 1 L pH调至8.3 A.2 0.5 TBE 缓 冲液 取10TBE缓冲液25 mL，加灭菌水475 mL，制成0.5TBE的工作液。A.3 2%琼 脂糖 电泳 液 琼脂糖 2.0 g 0.5TBE缓冲液 100 mL DB37/T 3997 2020 5 B B 附 录 B（资料 性附 录）LAMP 反应 管阳 性和 阴性 扩 增产物 可视 化和 电泳 结果 说明：A泳道1代表扩增产物中出现底部的白色沉淀，阳性；泳道2代表扩增产物中无白色沉淀，阴性；泳道3代表扩增产物中液体呈绿色，阳性；泳道4代表扩增产物中液体呈橙色，阴性；B泳道1和3代表扩增产物呈瀑布样条带，阳性；泳道2和4代表扩增产物无特异性条带，阴性。图B.1 LAMP 反应 管阳 性和 阴性 扩 增产物 可视 化和 电泳 结果 _